想要流式的染色結果好，需要用單細胞懸液，細胞團和細胞碎片容易堵塞進樣管。從固態組織樣本中制備單細胞懸液需要借助機械分離和(或者)酶消化。操作條件和酶的選擇等需要根據經驗進行一定的調整。以下是將四種常見的流式樣本制備成單細胞懸液的方法

　　一：組織培養細胞

　　 所需試劑器皿：

　　1、 Accutase酶 (eBioscience Cat#00-4555)

　　2、 流式染色緩沖液(eBioscience Cat#00-4222)

　　3、 15或50ml離心管

　　  單細胞懸液制備實驗步驟：

　　1、 對于懸浮生長的細胞，將細胞轉移至離心管中，進行計數和活力分析后進入第3步;

　　2、 對于貼壁生長的細胞系，我們建議用Accutase酶將細胞從培養皿中消化下來并分離聚集細胞。將細胞轉移至離心管中進行計數和活力分析后進入第3步(注意：Accutase酶會改變某些細胞的表面抗原表位);

　　3、 離心后，將細胞用流式染色緩沖液重懸至細胞濃度為2*10^7/ml。

　　二、淋巴組織細胞

　　一般來說機械分離淋巴組織足夠將細胞釋放為單細胞懸液。

　     單細胞懸液制備所需試劑器皿：

　　1、60mm×15mm的組織培養皿

　　2、3ml注射器

　　3、細胞過濾器(尼龍濾網)

　　4、流式染色緩沖液(eBioscience Cat#00-4222)

　　5、15或50ml離心管

　　單細胞懸液制備實驗步驟：

　　1、 將獲得的組織(脾臟、淋巴結、胸腺)放入到組織培養皿中，用3ml注射器活塞加壓的方法把組織分散為單細胞懸液(或者可以在10ml流式染色緩沖液總用兩片載玻片把組織壓成糊狀);

　　2、 用10ml流式染色緩沖液收集細胞，并將細胞懸液通過過濾器以除去細胞團和細胞碎片。將懸液收集到離心管中;

　　3、 4℃，300-400g離心細胞懸液4-5min，去除上清液;

　　4、 重懸沉淀細胞并做計數和活力分析;

　　5、 重復步驟3后，將細胞用流式染色緩沖液重懸至細胞濃度為2*10^7/ml。

　　三、非淋巴組織細胞

　　  所需試劑器皿：

　　1、 剪刀或手術刀片

　　2、 PBS或其他合適的生理緩沖液

　　3、 60mm×15mm的組織培養皿

　　4、 3ml注射器

　　5、 細胞過濾器(尼龍濾網)

　　6、 流式染色緩沖液(eBioscience Cat#00-4222)

　　7、 15或50ml離心管

　　  單細胞懸液制備實驗步驟：

　　1、 將組織用剪刀或手術刀片弄成2-4mm大小的碎塊;

　　2、 加入用PBS稀釋的適量的酶，應用合適孵育的時間和溫度參考所用酶的操作說明書(注意：酶的種類取決于組織的類型;

　　3、 用移液槍輕輕吹打分散細胞后，用過濾器過濾除去細胞團和碎片，收集細胞懸液至離心管中;

　　4、 4℃，300-400g離心細胞懸液4-5min，去除上清液;

　　5、 用PBS重懸細胞，去除多余的酶溶液;

　　6、 按步驟4的方法離心;

　　7、 重復步驟5和6;

　　8、 用流式染色緩沖液重懸細胞，并進行計數和活力分析;

　　9、 按步驟4的方法離心，將細胞用流式染色緩沖液重懸至細胞濃度為2*10^7/ml。

　　四、從全血中分離PBMC

　　 所需試劑器皿：

　　1、 PBS

　　2、 Ficoll或者其他密度梯度分離液

　　3、 流式染色緩沖液(eBioscience Cat#00-4222)

　　4、 15或50ml離心管

　　  單細胞懸液制備實驗步驟：

　　1、 將全血用PBS 1:1在錐形管中稀釋;

　　2、 在稀釋的樣本上面加入等體積的Ficoll;

　　3、 1000g離心20min;

　　4、 將位于PBS和Ficoll層間的PBMC轉移到一個新的管中;

　　5、 加入PBS清洗細胞;

　　6、 4℃，300-400g離心細胞懸液4-5min，去除上清液;

　　7、 用流式染色緩沖液重懸沉淀細胞并做計數和活力分析;

　　8、 重復步驟6后，將細胞用流式染色緩沖液重懸至細胞濃度為2*10^7/ml。